Determinación de hemólisis en cepas de Staphylococcus spp causantes de mastitis bovina

Determination of Hemolysis in Staphylococcus spp strains which cause bovine mastitis

Contenido principal del artículo

Yaline Sánchez-Neira Universidad de Boyacá
Maritza Angarita-Merchán Universidad de Boyacá

Resumen

Introducción. El género Staphylococcus presenta una amplia diversidad de determinantes de virulencia que comprende componentes de la pared celular y exoproteínas, las cuales contribuyen a su habilidad para colonizar y causar enfermedad en los mamíferos; las hemolisinas, como las toxinas α,y las hemolisinas β, γ y δ, son proteínas capaces de inducir lisis de eritrocitos y toxicidad en otras líneas celulares.


Objetivo. Determinar la actividad hemolítica en cepas de Staphylococcus spp. causantes de infecciones intramamarias en vacas lecheras de fincas del cordón central lechero del departamento de Boyacá.


Materiales y métodos. Se llevó a cabo un estudio cuantitativo, observacional y de corte transversal, en el cuál se determinó la hemólisis cualitativa y cuantitativa en 12 cepas de Staphylococcus spp. previamente confirmadas con ADN ribosómico 16S.


Resultados. Se encontró actividad hemolítica positiva en 9 de las 12 cepas estudiadas; 6 presentaron hemólisis beta; 3, hemólisis alfa, y 3, hemólisis gamma o ausencia de hemólisis. La determinación cuantitativa se llevó a cabo en 9 cepas estudiadas, encontrándose aumento progresivo de la absorbancia y disminución del número de eritrocitos, a medida que aumentaba el tiempo de incubación.


Conclusiones. La determinación cualitativa y cuantitativa de hemólisis en las cepas de Staphylococcus spp., permitió conocer la capacidad hemolítica presente en las cepas bacterianas aisladas de ubres de vacas con mastitis según el test de California en el departamento de Boyacá. Esto indica una implicación de riesgo patológico y epidemiológico en bovinos portadores de estas bacterias, por la posible transmisión a los consumidores de productos lácteos y sus derivados contaminados.


 

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Detalles del artículo

Biografía del autor/a (VER)

Yaline Sánchez-Neira, Universidad de Boyacá

Grupo de Investigación del Programa de Bacteriología y Laboratorio Clínico, Universidad de Boyacá, Tunja, Colombia.

Maritza Angarita-Merchán, Universidad de Boyacá

Grupo de Investigación del Programa de Bacteriología y Laboratorio Clínico, Universidad de Boyacá, Tunja, Colombia

Referencias (VER)

1. Monod J. The growth of bacterial cultures. Annu Rev Microbiol. 1949;3: 371-94. https://doi.org/10.1146/annurev.mi.03.100149.002103

2. Bou G, Fernández-Olmos A, García C, Sáez-Nieto JA, Valdezate S. Métodos de identificación bacteriana en el laboratorio de microbiología. Enferm Infecc Microbiol Clin. 2011; 29:601-8. https://doi.org/10.1016/j.eimc.2011.03.012

3. Mühlhauser PM, Rivas JL. Laboratorio de microbiología: conocimientos básicos para un clínico. Revista Médica Clínica Las Condes. 2014; 25:569-79. https://doi.org/10.1016/S0716-8640(14)70072-0

4. Peton V, Le Loir Y. Staphylococcus aureus in veterinary medicine. Infect Genet Evol. 2014; 21:602-15. https://doi.org/10.1016/j.meegid.2013.08.011

5. Budd KE, Mitchell J, Keane OM. Lineage associated expression of virulence traits in bovine-adapted Staphylococcus aureus. Vet Microbiol. 2016; 189:24-31. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2016.04.013

6. Mazzilli M, Piccinini R, Scali F, Zecconi A. Pattern characterization of genes involved in non-specific immune response in Staphylococcus aureus isolates from intramammary infections. Vet Science. 2015; 103:54-9. https://doi.org/10.1016/j.rvsc.2015.09.007

7. Gasque R. Enciclopedia bovina. Primera edición. Enciclopedia bovina. 2008;77-224. Fecha de consulta: 5 de octubre de 2017. Disponible en: https://es.scribd.com/doc/55407879/Enciclopedia-Bovina-UNAM

8. Seilie ES, Wardenburg JB. Staphylococcus aureus pore-forming toxins: The interface of pathogen and host complexity. Sem Cell Dev Biol. 2017; 72:101-16. https://doi.org/10.1016/j.semcdb.2017.04.003

9. da Costa LB, Rajala-Schultz PJ, Hoet A, Seo KS, Fogt K, Moon BS. Genetic relatedness and virulence factors of bovine Staphylococcus aureus isolated from teat skin and milk. J Dairy Sci. 2014; 97:6907-16. https://doi.org/10.3168/jds.2014-7972

10. Grumann D, Nübel U, Bröker BM. Staphylococcus aureus toxins – Their functions and genetics, in infection. Genet Evol. 2014; 21:583-92. https://doi.org/10.1016/j.meegid.2013.03.013

11. Wang D, Zhang L, Yong C, Shen M, Ali T, Shahid M, Han B. Relationships among superantigen toxin gene profiles, genotypes, and pathogenic characteristics of Staphylococcus aureus isolates from bovine mastitis. J Dairy Sci. 2017; 100:4276-86. https://doi.org/10.3168/jds.2016-12405

12. Pérez A, Betancourt A, Duque A, Lobo E. Cryopreservation and storage of Mycoplasma spp. Rev Salud Anim. 2016;38:105-11.

13. Lomonte B, Robles A, Mata E, Cerdas FL. Cálculo de la actividad hemolítica del complemento sérico (CH50) mediante un programa en "BASIC": comparación con el método gráfico manual. Rev Méd Hosp Nal Ni-os Costa Rica. 1986; 21:179-86.

14. Caligiore-Gei PF, Valdez JG. Adjustment of a rapid method for quantification of Fusarium spp. spore suspensions in plant pathology. Rev Argent Microbiol. 2015; 47:152-4. https://doi.org/10.1016/j.ram.2015.03.002

15. Jung P, Abdelbary MM, Kraushaar B, Fetsch A, Geisel J, Herrmann M, Bischoff M. Impact of bacteriophage Saint carriage on the immune evasion capacity and hemolytic potential of Staphylococcus aureus CC398. Vet Microbiol. 2017; 200:46-51. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2016.02.015

16. Foletti D, Strop P, Shaughnessy L, Hasa-Moreno A, Casas MG, Russell M, Pons J. Mechanism of action and in vivo efficacy of a human-derived antibody against Staphylococcus aureusα-hemolysin. J Mol Biol. 2013; 425:1641-54. https://doi.org/10.1016/j.jmb.2013.02.008

17. Haubert L, Kroning IS, Iglesias MA, da Silva WP. First report of the Staphylococcus aureus isolate from subclinical bovine mastitis in the South of Brazil harboring resistance gene dfrG and transposon family Tn916-1545. Microb Pathog. 2017; 113:242-7. https://doi.org/10.1016/j.semcdb.2017.04.003

18. Reddy PK, Shekar A, Kingston JJ, Sripathy MH, Batra H. Kudumala P. Evaluation of IgY capture ELISA for sensitive detection of alpha hemolysin of Staphylococcus aureus without staphylococcal protein A interference. J Immunol Methods. 2013; 391:31-38. https://doi.org/10.1016/j.jim.2013.02.004

19. Jean ATS, Swofford CA, Panteli JT, Brentzel ZJ, Forbes NS. Bacterial delivery of Staphylococcus aureusα-hemolysin causes regression and necrosis in murine tumors. Mol Ther. 2017; 22:1266-74. https://doi.org/10.1038/mt.2014.36

20. Berube BJ, Wardenburg JB. Staphylococcus aureus α-toxin: Nearly a century of intrigue. Toxins. 2013; 5:1140-66. https://doi.org/10.3390/toxins5061140

21. Artursson K, Söderlund R, Liu L, Monecke S, Schelin J. Genotyping of Staphylococcus aureus in bovine mastitis and correlation to phenotypic characteristics. Vet Microbiol. 2016; 193:156-61. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2016.08.012

22. Camussone CM, Calvinhoa LF. Factores de virulencia de Staphylococcus aureus asociados con infecciones mamarias en bovinos: relevancia y rol como agentes inmunógenos. Rev Argent Microbiol. 2013; 45:119-30. https://doi.org/10.1016/S0325-7541(13)70011-7

23. Savic NR, Katic V, Velebit B, Colovic S. Characteristics of enterotoxigenic coagulase positive Staphylococci isolated from bovine milk in cases of subclinical mastitis. Procedia Food Sci. 2015; 5:250-253. https://doi.org/10.1016/j.profoo.2015.09.070

24. Sugawara T, Yamashita D, Kato K, Peng Z, Ueda J, Kaneko J, Yao M. Structural basis for pore-forming mechanism of staphylococcal α-hemolysin. Toxicon. 2015; 108:226-31. https://doi.org/10.1016/j.toxicon.2015.09.033

25. Lundberg Å, Aspán A, Nyman A, Unnerstad HE, Waller KP. Associations between bacterial genotype and outcome of bovine clinical Staphylococcus aureus mastitis. Acta Vet Scand. 2014;56:2. https://doi.org/10.1186/1751-0147-56-2

26. Persson Y, Nyman AKJ, Grönlund-Andersson U. Etiology and antimicrobial susceptibility of udder pathogens from cases of subclinical mastitis in dairy cows in Sweden. Acta Vet Scand. 2011;53:36. https://doi.org/10.1186/1751-0147-53-36

27. Younis G, Awad A, Shabana B. Phenotypic and molecular characterization hemolysins of Staphylococcus aureus isolated from mastitic cow's milk in Egypt. Int J Agric Sc Vet Med. 2017; 5:83-93.

28. Kummel J, Stessl B, Gonano M, Walcher G, Bereuter O, Fricker M, Ehling-Schulz M. Staphylococcus aureus entrance into the dairy chain: Tracking S. aureus from dairy cow to cheese. Front Microbio. 2016; 7:1603. https://doi.org/10.3389/fmicb.2016.01603

29. Gil R, Amado K, Pe-a RJ, Remón DD. Mastitis bovina en Cuba. Artículo de revisión. Revista de Producción Animal. 2016; 28:39-50. http://scielo.sld.cu/pdf/rpa/v28n2-3/rpa06216.pdf

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