Determinación de Tolerancia a biocidas y detección de genes MdfA, TolC, MexC, MexA, acrB y oqxA en aislamientos de Klebsiella pneumonia y Escherichia coli
Determination of tolerance to biocides and detection of MdfA, TolC, MexC, MexA, acrB and oqxA genes in isolates of Klebsiella pneumonia and Escherichia coli
Contenido principal del artículo
Resumen
Introducción: Los biocidas y los antibióticos son ampliamente utilizados como antimicrobianos, la diferencia entre éstos es que los biocidas no se emplean en el control de infecciones, sino en la eliminación del crecimiento microbiano, son habitualmente usados a nivel hospitalario para la inactivación y esterilización de zonas contaminadas que constituye un filtro indispensable para la no aparición de aislamientos multirresistentes. Objetivo: se planteó como objetivo determinar la tolerancia a biocidas y la presencia de bombas de expulsión en aislados de infecciones. Metodología: Es un estudio observacional, descriptivo de corte transversal, contó con 32 aislamientos de bacterias Gram negativas, de Escherichia coli y Klebsiella pneumoniae, se emplearon biocidas como Cloruro de Belzalconio, Clorexidina, Cetrimida, Cloruro de Hexadecilpiridinio y Triclosan y presencia de bombas de expulsión. Resultados: Se detectaron aislados tolerantes a la concentración más alta C1 (10%) de los biocidas analizados distribuidas en 15 aislados para Triclosan y 2 para clorhexidina, de estas el mayor porcentaje pertenecen a aislados de E. coli. Conclusiones: se concluye que en las 17 aislados de Escherichia coli y 16 a Klebsiella pneumoniae, se detectó la presencia de los genes mdfA, TolC, MexC, MexA, acrB y oqxA, los cuales codifican para presencia de bombas de expulsión.
Descargas
Datos de publicación
Perfil evaluadores/as N/D
Declaraciones de autoría
Indexado en
- Sociedad académica
- Universidad de Boyacá
- Editorial
- Universidad de Boyacá
Detalles del artículo
Referencias (VER)
Ministerio de Salud y Protección Social. Detectar, prevenir y reducir infecciones asociadas con la atención en salud [Internet]. Bogotá; 2014 [cited 2019 Feb 14]. p. 108.
Almeida González LB, Fernández Márquez ML, López Aguayo MC, Lucas López R, Marín Garrido A, Gálvez del Postigo Ruiz A, et al. Resistencia a biocidas en aislados de Salmonella sp. aisladas de huevo - Dialnet. An la Real Acad Ciencias Vet Andalucía Orient. ISSN: 1130-2534, vol 25, 2012, pág 159-172
Lavilla-Lerma M-L. Estudio de los determinantes genéticos de resistencias a biocidas y su papel en la resistencia cruzada con antibióticos en bacterias de origen alimentario. 2014 Nov 7
Ma Carmen López Aguayo, María José Grande Burgos, Rosario Lucas López AG. Resistencia a biocidas de diferentes aislados de escherichia coli. An la Real Acad Ciencias Vet Andalucía Orient ISSN 1130-2534, Vol 23, 2010, págs 121-136
Puerta-García EA, Mateos-Rodríguez F. Enterobacterias. Medicine (Baltimore). 2010;10(51):3426-31. https://doi.org/10.1016/S0304-5412(10)70056-1
Cabrera, C. E., Gómez, R. F., & Zúñiga, A. E. (2007). La resistencia de bacterias a antibióticos, antisépticos y desinfectantes una manifestación de los mecanismos de supervivencia y adaptación. Colombia médica, 38(2), 149-158. https://doi.org/10.25100/cm.v38i2.499
Soto Acosta FM. Participación de bombas de expulsión, biofilm, alginato y presencia de la proteína OprD en la resistencia a antibióticos en Pseudomonas aeruginosa [Internet]. Benemérita Universidad Autónoma de Puebla; 2019.
Tauch A, Schlüter A, Bischoff N, Goesmann A, Meyer F, Pühler A. The 79,370-bp conjugative plasmid pB4 consists of an IncP-1beta backbone loaded with a chromate resistance transposon, the strA-strB streptomycin resistance gene pair, the oxacillinase gene bla(NPS-1), and a tripartite antibiotic efflux system of the resistance-nodulation-division family. Mol Genet Genomics [Internet]. 2003 Feb [cited 2018 Sep 26];268(5):570-84. https://doi.org/10.1007/s00438-002-0785-z
Wales A, Davies R, Wales AD, Davies RH. Co-Selection of Resistance to Antibiotics, Biocides and Heavy Metals, and Its Relevance to Foodborne Pathogens. Antibiotics [Internet]. 2015 Nov 13 [cited 2019 Feb 14];4(4):567-604. https://doi.org/10.3390/antibiotics4040567
Deus D, Krischek C, Pfeifer Y, Sharifi AR, Fiegen U, Reich F, et al. Comparative analysis of the susceptibility to biocides and heavy metals of extended-spectrum β-lactamase-producing Escherichia coli isolates of human and avian origin, Germany. Diagn Microbiol Infect Dis. 2017 May 1;88(1):88-92. https://doi.org/10.1016/j.diagmicrobio.2017.01.023
Alonso-Hernando A, Alonso-Calleja C, Capita R. Effects of exposure to poultry chemical decontaminants on the membrane fluidity of Listeria monocytogenes and Salmonella enterica strains. Int J Food Microbiol [Internet]. 2010 Feb 28 [cited 2019 Feb 14];137(2-3):130-6. https://doi.org/10.1016/j.ijfoodmicro.2009.11.022
Moen B, Rudi K, Bore E, Langsrud S, Moen B, Rudi K, et al. Subminimal Inhibitory Concentrations of the Disinfectant Benzalkonium Chloride Select for a Tolerant Subpopulation of Escherichia coli with Inheritable Characteristics. Int J Mol Sci [Internet]. 2012 Mar 28. https://doi.org/10.3390/ijms13044101
Güldas He, Kececi Ad, Cetin Es, Ozturk T, Kaya Bü. Evaluation of antimicrobial efficacy of cetrimide and Glycyrrhiza glabra L. extract against Enterococcus faecalis biofilm grown on dentin discs in comparison with NaOCl. Dent Mater J
Patiño Bello, Diana Paola, et al. "Uso de biocidas y mecanismos de respuesta bacteriana." Revista Cubana de Investigaciones Biomédicas 37.3 (2018): 1-17.
Kundu, Ramit, et al. "Burden of biocide resistance among multidrug-resistant bacteria isolated from various clinical specimens in a tertiary care hospital." Indian Journal of Medical Microbiology 46 (2023): 100478. https://doi.org/10.1016/j.ijmmb.2023.100478
Zheng L, Cai G, Wang S, Liao M, Li Y, Lin J. A microfluidic colorimetric biosensor for rapid detection of Escherichia coli O157:H7 using gold nanoparticle aggregation and smart phone imaging. Biosens Bioelectron. 2019 Jan 15;124-125:143-9. https://doi.org/10.1016/j.bios.2018.10.006
Fang K, Jin X, Hong SH. Probiotic Escherichia coli inhibits biofilm formation of pathogenic E. coli via extracellular activity of DegP. Sci Reports 2018 81 [Internet]. 2018 Mar 21. https://doi.org/10.1038/s41598-018-23180-1
Wyres KL, Lam MMC, Holt KE. Population genomics of Klebsiella pneumoniae. Nat Rev Microbiol. 2020 Jun 1;18(6):344-59. https://doi.org/10.1038/s41579-019-0315-1
Gual-de-Torrella, Ana, et al. "In vitro activity of six biocides against carbapenemase-producing Klebsiella pneumoniae and presence of genes encoding efflux pumps." Enfermedades Infecciosas y Microbiología Clínica 40.7 (2022): 371-376. https://doi.org/10.1016/j.eimce.2021.05.016
Diomedi Pacheco A, Chacón E, Delpiano L, Hervé B, Jemenao MI, Medel M, et al. Antiseptics and disinfectants: Aiming at rational use. recommendations of the advisory committee on healthcare associated infections. Sociedad Chilena de infectología. Rev Chil Infectol [Internet]. 2017 [cited 2021 May 17];34(2):156-74. https://doi.org/10.4067/S0716-10182017000200010
Chen X, Zhang W, Pan W, Yin J, Pan Z, Gao S, et al. Prevalence of qnr, aac(6′)-Ib-cr, qepA, and oqxAB in Escherichia coli Isolates from Humans, Animals, and the Environment. Antimicrob Agents Chemother [Internet]. 2012 Jun [cited 2022 Mar 4];56(6):3423-7. https://doi.org/10.1128/AAC.06191-11
Perez F, Rudin SD, Marshall SH, Coakley P, Chen L, Kreiswirth BN, et al. OqxAB, a Quinolone and Olaquindox Efflux Pump, Is Widely Distributed among Multidrug-Resistant Klebsiella pneumoniae Isolates of Human Origin. Antimicrob Agents Chemother [Internet]. 2013 Sep. https://doi.org/10.1128/AAC.00725-13
Bratu S, Landman D, George A, Salvani J, Quale J. Correlation of the expression of acrB and the regulatory genes marA, soxS and ramA with antimicrobial resistance in clinical isolates of Klebsiella pneumoniae endemic to New York City. J Antimicrob Chemother [Internet]. 2009 Aug 1. https://doi.org/10.1093/jac/dkp186
Baranova N, Nikaido H. The BaeSR two-component regulatory system activates transcription of the yegMNOB (mdtABCD) transporter gene cluster in Escherichia coli and increases its resistance to novobiocin and deoxycholate. J Bacteriol [Internet]. 2002 [cited 2022 Mar 4];184(15):4168-76. https://doi.org/10.1128/JB.184.15.4168-4176.2002
Curiao TIG. Análisis fenotípico, genómico y bioinformático de los elementos genéticos asociados a resistencia a antibióticos y biocidas en enterobacterias. [Madrid]: Universidad Complutense de Madrid; 2014.
Yardeni EH, Zomot E, Bibi E. The fascinating but mysterious mechanistic aspects of multidrug transport by MdfA from Escherichia coli. Res Microbiol. 2018 Sep 1;169(7-8):455-60. https://doi.org/10.1016/j.resmic.2017.09.004
Muriel Masi, Matthieu Réfregiers, Klaas M. Pos, Jean-Marie Pagès. Mechanisms of envelope permeability and antibiotic influx and efflux in Gram-negative bacteria. Nat Microbiol [Internet]. 2017 [cited 2023 Jan 18];2(3):1-7. https://doi.org/10.1038/nmicrobiol.2017.1
Piddock LJV. Clinically relevant chromosomally encoded multidrug resistance efflux pumps in bacteria. Clin Microbiol Rev [Internet]. 2006 Apr [cited 2023 Jan 18];19(2):382-402. https://doi.org/10.1128/CMR.19.2.382-402.2006
Gual-de-Torrella A, Delgado-Valverde M, Pérez-Palacios P, Oteo-Iglesias J, Pascual Á, Fernández-Cuenca F. In vitro activity of six biocides against carbapenemase-producing Klebsiella pneumoniae and presence of genes encoding efflux pumps. Enferm Infecc Microbiol Clin. 2021. https://doi.org/10.1016/j.eimc.2021.05.004
Gadea R, Fernández Fuentes MÁ, Pérez Pulido R, Gálvez A, Ortega E. Adaptive tolerance to phenolic biocides in bacteria from organic foods: Effects on antimicrobial susceptibility and tolerance to physical stresses. Food Res Int. 85: 131-143. https://doi.org/10.1016/j.foodres.2016.04.033
Blair JM, Piddock LJ. Structure, function and inhibition of RND efflux pumps in Gram-negative bacteria: an update. Vol. 12, Current Opinion in Microbiology. Elsevier Current Trends; 2009. p. 512-9. https://doi.org/10.1016/j.mib.2009.07.003
Romero García JL. Resistencias a diferentes antimicrobianos en aislados bacterianas procedentes de pescado. [Internet]. [Jaen]: Universidad de Jaen; 2018 [cited 2021 May 17]. Available from: http://150.214.170.229/handle/10953/922
Nuñez L, Moretton J. Perfil microbiológico y resistencia bacteriana a desinfectantes en aguas residuales de hospital. Hig y Sanid Ambient. 2006;201(6):197-201.