Efecto de la degradación post mórtem sobre la detección inmunohistoquímica de antígenos en el cerebro de ratón
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Monroy-Gómez JA, Torres-Fernández O. Efecto de la degradación post mórtem sobre la detección inmunohistoquímica de antígenos en el cerebro de ratón. Revista Investig. Salud Univ. Boyacá [Internet]. 30 de junio de 2014 [citado 21 de diciembre de 2024];1(1):45-62. Disponible en: https://revistasdigitales.uniboyaca.edu.co/index.php/rs/article/view/35
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Si bien lo ideal es llevar a cabo la preservación de los tejidos en el menor tiempo posible luego de la muerte de un animal objeto de un estudio neurohistoquímico, con frecuencia es inevitable trabajar con tejido nervioso obtenido varias horas post mórtem.
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1. Jorge D, Lara C, Ortiz C. Interpretación básica de inmunohistoquímica. Características generales de diversos anticuerpos y su localización celular y subcelular. Patología. 2007;45:126-40.
2. Meléndez M, Dujarric M, Castellano O, Posada A, Ponce de León O, González A. Evaluación de la inmunohistoquímica para el diagnóstico de las enfermedades autoinmunes. Rev Cubana Invest Biomed. 2004;23:133-8.
3. Baimbridge K, Celio M, Rogers J. Calcium-binding protein in the nervous system. Trends Neurosci. 1992;15:303-8.
4. Ulfig N. Calcium-binding proteins in the human developing brain. Adv Anat Embryol Cell Biol. 2002;165:1-92.
5. Anelli R, Heckman C. The calcium binding proteins calbindin, parvalbumin, and calretinin have specific patterns of expression in the gray matter of cat spinal cord. J Neurocytol. 2005;34:369-85.
6. Torres-Fernández O, Yepes GE, Gómez JE, Pimienta HJ. Efecto de la infección por el virus de la rabia sobre la expresión de parvoalbúmina, calbindina y calretinina en la corteza cerebral de ratones. Biomédica. 2004;24:63-78.
7. Buijs M, Basualdo M. Anticuerpos dirigidos a pequeñas moléculas de neurotransmisores y péptidos: producción y aplicación de anticuerpos a dopamina, serotonina, GABA, vasopresina, péptido vasoactivo intestinal, neuropéptido y, somatostatina y sustancia P. Rev Esp Cienc Quim Biol. 2009;12:38-44.
8. De Felipe J. Cortical interneurons: from Cajalto 2001. Prog Brain Res. 2002;136:216-38.
9. Eyzaguyirre E, Haque AK. Application of immunohistochemistry to infections. Arch Pathol Lab Med. 2008;132:424-31.
10. Calore E, Pérez N, Martins J, Cárdenas P. Inmunohistoquímica en un caso de encefalitis por virus de Epstein Barr. Rev Chil Infectol. 2012;29:687-8.
11. Cartier L, Vergara C, Valenzuela M. Inmunohistoquímica de los cambios degenerativos del sistema nervioso central en paraparesias espásticas asociadas al virus linfotrópico humano T tipo l (HTLV-l). Rev Med Chile. 2007;135:1139-46.
12. Lavenex P, Banta P, Bennett J, Amaral D. Postmortem changes in the neuroanatomical characteristics of the primate brain: The hippocampal formation. J Comp Neurol. 2009;512:27-51.
13. Lavenex P. Neuroanatomy methods in humans and animals. In: Squire, LR, editor. New encyclopedia of neuroscience. Elsevier; Amsterdam: 2008. p. 68-78.
14. Trimarchi C, Smith J. Diagnostic evaluation. En: Jackson A, Wunner H. editores. Rabies. San Diego: Academic Press: 2002. p.307-49.
15. Bidmon HJ, Palomero-Gallagher N, Zilles K. Postoperative investigations in epilepsy surgery: Enzymes of the oxidative stress cascade, multi-drug transporters and transmitter receptors. Klin Neurophysiol. 2002;33:168-77.
16. Hilbig H, Bidmon HJ, Oppermann O, Remmerbach T. Influence of post-mortem delay and storage temperature on the immunohistochemical detection of antigens in the CNS of mice. Exp Toxicol Pathol. 2004;56:159-71.
17. Oka T, Tagawa K, Ito H, Okazawa H. Dynamic changes of the phosphoproteome in postmortem mouse brains. PLoS ONE. 2011;6:e21405. doi:10.1371/journal.pone.0021405.
18. Andressen C, Blümcke I, Celio MR. Calcium-binding proteins: Selective markers of nerve cells. Cell Tissue Res. 1993;271:181-208.
19. Matakas F, Cervos-Navarro J, Schneider A. Experimental brain death 1. Morphology and fine structure of the brain. J Neurol Neurosurg Psychiatry. 1973;36:497-508.
20. Torres-Fernández O, Yepes GE, Gómez JE, Pimienta HJ. Calbindin distribution in cortical and subcortical brain structures of normal and rabies-infected mice. Int J Neurosci. 2005;115:1375-82.
21. Rengifo AC, Torres-Fernández O. Disminución del número de neuronas que expresan GABA en la corteza cerebral de ratones infectados con rabia. Biomédica. 2007;27:548-58.
22. Santamaría G, Rengifo AC, Torres-Fernández O. Expresión de glutamato en la corteza cerebral de ratones normales y ratones infectados con el virus de la rabia. Revista Científica Unincca. 2010;15:67-81.
23. Torres-Fernández O, Yepes G, Gómez J. Alteraciones de la morfología dendrítica neuronal de la corteza cerebral de ratones infectados con el virus de la rabia: un estudio con la técnica de Golgi. Biomédica. 2007;27:605-13.
24. Lamprea N, Torres-Fernández O. Evaluación inmunohistoquímica de la expresión de calbindina en el cerebro de ratones en diferentes tiempos después de la inoculación con el virus de la rabia. Colom Med. 2008;39:7-13.
25. Monroy-Gómez J, Torres-Fernández O. Distribución de calbindina y parvoalbú- mina y efecto del virus de la rabia sobre su expresión en la médula espinal de ratones. Biomédica. 2013;33: 564-73
26. Leuba G, Kraftsik R, Saini K. Quantitative distribution of parvalbumin, calretinin and calbindin D-28k immunoreactive neurons in the visual cortex of normal and Alzheimer cases. Exp Neurol.1998;152:278-91.
27. Masliah E, Ge N, Achim C, Hansen L, Wiley A. Selective neuronal vulnerability in HIV encephalitis. J Neuropathol Exp Neurol. 1992;51:585-93.
28. Masliah E, Ge N, Achim C, Wiley A. Differential vulnerability of calbindin-immunoreactive neurons in HIV encephalitis. J Neuropathol Exp Neurol. 1995;54:350-57.
29. Sarmiento L, Rodríguez G, De Serna C, Boshell J, Orozco L. Detection of rabies virus antigens in tissue: Immunoenzymatic method. Patología.1999;37:7-10.
30. Narayan S, Vasanth J, Karavattu V, Sukumaran M. Rapid diagnosis of rabies in humans and animals by a dot blot enzyme immunoassay. Int J Infect Dis. 2004;8:339-45.
2. Meléndez M, Dujarric M, Castellano O, Posada A, Ponce de León O, González A. Evaluación de la inmunohistoquímica para el diagnóstico de las enfermedades autoinmunes. Rev Cubana Invest Biomed. 2004;23:133-8.
3. Baimbridge K, Celio M, Rogers J. Calcium-binding protein in the nervous system. Trends Neurosci. 1992;15:303-8.
4. Ulfig N. Calcium-binding proteins in the human developing brain. Adv Anat Embryol Cell Biol. 2002;165:1-92.
5. Anelli R, Heckman C. The calcium binding proteins calbindin, parvalbumin, and calretinin have specific patterns of expression in the gray matter of cat spinal cord. J Neurocytol. 2005;34:369-85.
6. Torres-Fernández O, Yepes GE, Gómez JE, Pimienta HJ. Efecto de la infección por el virus de la rabia sobre la expresión de parvoalbúmina, calbindina y calretinina en la corteza cerebral de ratones. Biomédica. 2004;24:63-78.
7. Buijs M, Basualdo M. Anticuerpos dirigidos a pequeñas moléculas de neurotransmisores y péptidos: producción y aplicación de anticuerpos a dopamina, serotonina, GABA, vasopresina, péptido vasoactivo intestinal, neuropéptido y, somatostatina y sustancia P. Rev Esp Cienc Quim Biol. 2009;12:38-44.
8. De Felipe J. Cortical interneurons: from Cajalto 2001. Prog Brain Res. 2002;136:216-38.
9. Eyzaguyirre E, Haque AK. Application of immunohistochemistry to infections. Arch Pathol Lab Med. 2008;132:424-31.
10. Calore E, Pérez N, Martins J, Cárdenas P. Inmunohistoquímica en un caso de encefalitis por virus de Epstein Barr. Rev Chil Infectol. 2012;29:687-8.
11. Cartier L, Vergara C, Valenzuela M. Inmunohistoquímica de los cambios degenerativos del sistema nervioso central en paraparesias espásticas asociadas al virus linfotrópico humano T tipo l (HTLV-l). Rev Med Chile. 2007;135:1139-46.
12. Lavenex P, Banta P, Bennett J, Amaral D. Postmortem changes in the neuroanatomical characteristics of the primate brain: The hippocampal formation. J Comp Neurol. 2009;512:27-51.
13. Lavenex P. Neuroanatomy methods in humans and animals. In: Squire, LR, editor. New encyclopedia of neuroscience. Elsevier; Amsterdam: 2008. p. 68-78.
14. Trimarchi C, Smith J. Diagnostic evaluation. En: Jackson A, Wunner H. editores. Rabies. San Diego: Academic Press: 2002. p.307-49.
15. Bidmon HJ, Palomero-Gallagher N, Zilles K. Postoperative investigations in epilepsy surgery: Enzymes of the oxidative stress cascade, multi-drug transporters and transmitter receptors. Klin Neurophysiol. 2002;33:168-77.
16. Hilbig H, Bidmon HJ, Oppermann O, Remmerbach T. Influence of post-mortem delay and storage temperature on the immunohistochemical detection of antigens in the CNS of mice. Exp Toxicol Pathol. 2004;56:159-71.
17. Oka T, Tagawa K, Ito H, Okazawa H. Dynamic changes of the phosphoproteome in postmortem mouse brains. PLoS ONE. 2011;6:e21405. doi:10.1371/journal.pone.0021405.
18. Andressen C, Blümcke I, Celio MR. Calcium-binding proteins: Selective markers of nerve cells. Cell Tissue Res. 1993;271:181-208.
19. Matakas F, Cervos-Navarro J, Schneider A. Experimental brain death 1. Morphology and fine structure of the brain. J Neurol Neurosurg Psychiatry. 1973;36:497-508.
20. Torres-Fernández O, Yepes GE, Gómez JE, Pimienta HJ. Calbindin distribution in cortical and subcortical brain structures of normal and rabies-infected mice. Int J Neurosci. 2005;115:1375-82.
21. Rengifo AC, Torres-Fernández O. Disminución del número de neuronas que expresan GABA en la corteza cerebral de ratones infectados con rabia. Biomédica. 2007;27:548-58.
22. Santamaría G, Rengifo AC, Torres-Fernández O. Expresión de glutamato en la corteza cerebral de ratones normales y ratones infectados con el virus de la rabia. Revista Científica Unincca. 2010;15:67-81.
23. Torres-Fernández O, Yepes G, Gómez J. Alteraciones de la morfología dendrítica neuronal de la corteza cerebral de ratones infectados con el virus de la rabia: un estudio con la técnica de Golgi. Biomédica. 2007;27:605-13.
24. Lamprea N, Torres-Fernández O. Evaluación inmunohistoquímica de la expresión de calbindina en el cerebro de ratones en diferentes tiempos después de la inoculación con el virus de la rabia. Colom Med. 2008;39:7-13.
25. Monroy-Gómez J, Torres-Fernández O. Distribución de calbindina y parvoalbú- mina y efecto del virus de la rabia sobre su expresión en la médula espinal de ratones. Biomédica. 2013;33: 564-73
26. Leuba G, Kraftsik R, Saini K. Quantitative distribution of parvalbumin, calretinin and calbindin D-28k immunoreactive neurons in the visual cortex of normal and Alzheimer cases. Exp Neurol.1998;152:278-91.
27. Masliah E, Ge N, Achim C, Hansen L, Wiley A. Selective neuronal vulnerability in HIV encephalitis. J Neuropathol Exp Neurol. 1992;51:585-93.
28. Masliah E, Ge N, Achim C, Wiley A. Differential vulnerability of calbindin-immunoreactive neurons in HIV encephalitis. J Neuropathol Exp Neurol. 1995;54:350-57.
29. Sarmiento L, Rodríguez G, De Serna C, Boshell J, Orozco L. Detection of rabies virus antigens in tissue: Immunoenzymatic method. Patología.1999;37:7-10.
30. Narayan S, Vasanth J, Karavattu V, Sukumaran M. Rapid diagnosis of rabies in humans and animals by a dot blot enzyme immunoassay. Int J Infect Dis. 2004;8:339-45.
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